Загрузить PDF Загрузить PDF

Окрашивание по Граму — это экспрессный метод исследования, позволяющий установить наличие бактерий в образце и дифференцировать их как грамположительные либо грамотрицательные. Метод основан на химических и физических свойствах клеточной оболочки. [1] Метод Грама почти всегда применяют в качестве первого шага при диагностике бактериальных инфекций .

Метод был предложен датским ученым Г.К.Грамом , который разработал его в 1882 и опубликовал в 1884 году, как способ, позволяющий дифференцировать сходные по симптомам бактериальные инфекции: Streptococcus pneumoniae (пневмококк) и Klebsiella pneumoniae . [2]

Часть 1
Часть 1 из 3:

Подготовка образца

Загрузить PDF
  1. Наденьте перчатки и подвяжите длинные волосы, чтобы не загрязнить исследуемый образец. Выберите рабочее место под вытяжкой или в другом хорошо проветриваемом месте и продезинфицируйте его. Прежде чем приступить к работе, проверьте, исправны ли горелка Бунзена и оптический микроскоп.
  2. Если предметное стекло недостаточно чистое, вымойте его водой с мылом, чтобы удалить жир и грязь. После этого продезинфицируйте его этанолом, очистителем для стекол или другим способом, который принят в вашей лаборатории.
  3. Окрашивание по Граму позволяет увидеть отдельные бактерии в медицинских образцах или культуры бактерий в чашке Петри. Для начала нанесите на предметное стекло тонкий слой исследуемой жидкости. Рекомендуется не выдерживать образец дольше 24 часов, так как со временем у бактерий повреждаются клеточные стенки, и их реакция на окрашивание по Граму становится менее предсказуемой. [3]
    • Если вы исследуете образец тканей, нанесите на предметное стекло 1–2 капли. Распределите жидкость тонким слоем по предметному стеклу с помощью края другого чистого стекла. Подождите, пока образец высохнет.
    • Если вы окрашиваете бактерии из чашки Петри, стерилизуйте бактериологическую петлю в пламени горелки Бунзена, пока она не начнет светиться, а затем дайте ей остыть. Нанесите петлей каплю стерилизованной воды на стекло, затем повторно стерилизуйте петлю, дайте ей остыть, аккуратно захватите крохотный образец культуры бактерий и растворите его в воде. [4]
    • Бактерии в питательной среде сначала следует перемешать в вихревом смесителе, а затем петлей перенести образец на предметное стекло без добавления воды. [5]
    • Если вы исследуете мазок, слегка прижмите его к предметному стеклу. [6]
  4. Под действием тепла бактерии пристанут к стеклу, и их не смоет при окрашивании. Быстро проведите 2-3 раза предметным стеклом над верхней частью пламени горелки или нагрейте его на электрическом нагревателе. Не перегрейте предметное стекло, чтобы не внести изменения в образец. Если вы используете горелку Бунзена, следите, чтобы пламя было небольшим и имело вид голубого конуса, а не высокого оранжевого столба. [7]
    • Можно зафиксировать препарат и метанолом. Нанесите на высушенный образец 1-2 капли метилового спирта, слейте излишки спирта и высушите предметное стекло на воздухе. Данный способ предпочтительнее в силу того, что он меньше повреждает исследуемые клетки и дает более чистый фон.
  5. Этот лоток представляет собой неглубокое металлическое, стеклянное или пластиковое блюдце с мелкой сеткой для поддержки образцов. Положите стекло с препаратом на сетку, так чтобы используемая при окраске жидкость стекала в лоток.
    • Если у вас нет лотка для окрашивания, предметное стекло можно положить поверх пластиковой формы для льда. [8]
Часть 2
Часть 2 из 3:

Проведение окрашивания по Граму

Загрузить PDF
  1. Нанесите на образец раствор кристаллического фиолетового (кристаллвиолета). Наберите раствор кристаллического фиолетового (его иногда называют генциановым фиолетовым) в пипетку и нанесите несколько капель на препарат. Подождите 30-60 секунд. Кристаллический фиолетовый (КФ) диссоциирует в воде с образованием ионов КФ+ и хлора (Cl–). Эти ионы проникают через клеточную оболочку и мембрану как грамположительных, так и грамотрицательных клеток. Ионы КФ+ взаимодействуют с отрицательно заряженными компонентами бактериальных клеток и окрашивают их в фиолетовый цвет.
    • Во многих лабораториях используют "кристаллвиолет Хукера". В эту модификацию входит щавелевокислый аммоний, который предотвращает выпадение осадка. [9]
  2. Наклоните предметное стекло и пустите на него слабую струю дистиллированной или водопроводной воды из промывной склянки. Направляйте струю в сторону от препарата, чтобы вода лишь слегка омывала его. [10] Будьте осторожны, так как слишком сильный напор может смыть грамположительные бактерии .
  3. С помощью пипетки покройте образец йодом. Оставьте йод хотя бы на 60 секунд, после чего аккуратно смойте его водой так же, как раньше смыли краситель. [11] Йод в виде отрицательно заряженных ионов взаимодействует с ионами КФ+, в результате чего во внешних и внутренних слоях клеток формируются крупные комплексы кристаллвиолета и йода. Это фиксирует попавший в клетки кристаллвиолет.
    • Йод является едким веществом. Избегайте контакта йода с кожей, не глотайте его и не вдыхайте его пары.
  4. Обычно используют смесь ацетона и этанола в пропорции 1:1, при этом следует аккуратно выдержать время. Расположите предметное стекло под углом и добавляйте на него обесцвечивающее средство до тех пор, пока стекающая жидкость не потеряет фиолетовый оттенок и станет прозрачной. Обычно это занимает не более 10 секунд, особенно если обесцвечивающий раствор содержит большое количество ацетона. Если вы вовремя не остановитесь, раствор может вымыть краситель как из грамположительных, так и грамотрицательных клеток, и вам придется повторить процедуру окрашивания. Немедленно смойте остатки обесцвечивающего раствора так же, как делали это ранее с красителем.
    • В качестве обесцвечивающего вещества можно также использовать чистый (95% и выше) ацетон. [12] Чем больше в обесцвечивающем растворе ацетона, тем быстрее произойдет обесцвечивание, что потребует большей точности.
    • Если вам сложно угадать со временем, добавляйте обесцвечивающий раствор по одной капле. [13]
  5. Контрастный краситель, в качестве которого используют обычно сафранин или фуксин, позволяет получить дополнительный контраст между грамположительными и грамотрицательными клетками за счет того, что окрашивает бесцветные (грамотрицательные) бактерии в розовый или красный цвет. [14] [15] Оставьте контрастный краситель на образце хотя бы на 45 секунд, после чего смойте его водой. [16]
    • Фуксин придает многим грамотрицательным бактериям (к примеру, таким как haemophilus и legionella ) более интенсивный цвет. [17] Ввиду этого его рекомендуется использовать новичкам.
  6. Можно просто оставить его на воздухе, либо промокнуть фильтровальной бумагой. [18] После этого окрашивание по Граму завершено.
Часть 3
Часть 3 из 3:

Проверка результатов

Загрузить PDF
  1. Положите стекло с образцом на предметный столик. Бактерии значительно различаются по размерам, поэтому вам может понадобиться увеличение от 400x до 1000x. [19] При тысячекратном увеличении для лучшего контраста рекомендуется использовать объектив с масляной иммерсией. Нанесите на предметное стекло каплю иммерсионного масла, и при этом старайтесь, чтобы стекло не двигалось, иначе в масле могут образоваться пузырьки. [20] Затем с помощью турели микроскопа выставьте необходимый вам объектив так, чтобы он коснулся масла.
    • Метод масляной иммерсии применим лишь для специальных, а не "сухих" объективов.
  2. Рассмотрите предметное стекло под оптическим микроскопом. Грамположительные бактерии будут окрашены в фиолетовый цвет, поскольку внутри их толстых клеточных стенок оказался кристаллвиолет. Грамотрицательные бактерии должны быть розовыми или красными, так как кристаллвиолет был вымыт через их тонкие клеточные стенки, после чего в них проник розовый контрастный краситель.
    • Если образец слишком толст, это может привести к ошибочным положительным результатам. Если бактерии всех типов выглядят как грамположительные, окрасьте еще один образец, чтобы удостовериться в правильности результатов.
    • Если образец слишком долго находился под воздействием обесцвечивающего раствора, это может привести к ошибочным отрицательным результатам. Окрасьте еще один образец, чтобы убедиться в том, что все бактерии действительно грамотрицательные.
  3. Если вы не уверены в том, какие бактерии видите, то просмотрите набор эталонных изображений, которые отсортированы по форме бактерий и результатам окрашивания по Граму. Подобный набор можно найти в Интернете на National Microbial Pathogen Database , Bacteria in Photos и многих других сайтах. Ниже приведены наиболее распространенные или важные для диагностики примеры, которые помогут вам идентифицировать бактерии.
  4. Вид бактерий можно определить по их форме в микроскопе: часто это бывают кокки (округлые) и бациллы (палочковидные). Вот несколько распространенных форм грамположительных (фиолетовых) бактерий:
    • Грамположительные кокки — как правило это стафилококки (в виде виноградных гроздьев) или стрептококки (образуют цепочки).
    • Грамположительные палочки включают в себя бациллы , клостридии , коринебактерии и листерии . Представители рода актиномицеты часто имеют ответвления и нити. [21]
  5. Часто грамотрицательные (розовые) бактерии разделяют на три группы: кокки (округлые), палочковидные (длинные и тонкие) и кокковидные, которые имеют промежуточную форму.
    • Грамотрицательные кокки чаще всего представлены различными видами Neisseria .
    • Грамотрицательные палочки включают в себя кишечную палочку , энтеробактерии , клебсиеллы , цитробактерии , серратии , протеи , сальмонеллы , шигеллы , псевдомонады и многие другие. Холерные вибрионы также могут иметь вид обычных или изогнутых палочек. [22]
    • Грамотрицательные "кокковидные" палочки (или "коккобацилы") включают в себя бордетеллы , бруцеллы , гемофилы и пастереллы .
  6. Некоторые бактерии не поддаются однозначному окрашиванию из-за того, что их клеточные стенки непрочны или покрыты жирами. Такие бактерии могут одновременно окрашиваться в фиолетовый и розовый цвет в пределах одной клетки, либо клетки одного и того же вида могут окрашиваться по-разному в одном мазке. Подобная проблема может наблюдаться на любом образце бактерий, который пролежал более 24 часов, однако некоторые виды бактерий подвержены этому независимо от свежести образца. В этом случае для точного определения бактерий могут понадобиться более специализированные методы, такие как окраска по Цилю-Нильсену, наблюдение за ростом культуры, тест TSI (тройной сахар железа), генетическое тестирование. [23]
    • Актиномицеты , артробактерии , коринебактерии , микобактерии и пропионбактерии считаются грамположительными, однако часто их окрашивание по Граму приводит к неоднозначным результатам. [24]
    • Мелкие и тонкие бактерии, такие как трепонемы , хламидии и риккетсии , плохо поддаются окрашиванию по Граму. [25]
  7. Процедура утилизации отходов зависит от конкретной лаборатории и того, какие материалы использовались. Как правило, жидкость из лотка для окрашивания считается опасным материалом и переливается в плотно закрывающиеся бутылки. Использованные предметные стекла вымачиваются в 10%-ном растворе отбеливателя, после чего помещаются в контейнеры для сбора и утилизации игл и медицинских отходов.

Советы

  • Помните о том, что результаты окрашивания по Граму во многом определяются тем, насколько хорош образец. Необходимо научить пациентов получать хорошие образцы для анализа (например, мокроту после глубокого кашля, а не простую слюну).
  • При обесцвечивании этиловый спирт действует медленнее, чем ацетон.
  • При работе в лаборатории соблюдайте стандартную технику безопасности.
  • Для практики используйте ватную палочку, поскольку образец должен содержать как грамположительные, так и грамотрицательные бактерии. Если наблюдается лишь один тип бактерий, то это, скорее всего, означает, что вы либо недостаточно, либо слишком сильно обработали образец обесцвечивающим раствором. [26]
  • Предметные стекла можно брать деревянной прищепкой. [27]

Предупреждения

  • Ацетон и спирт огнеопасны. При попадании на ладони ацетон обезжиривает кожу, в результате чего в нее легче впитываются другие вещества. Надевайте перчатки и соблюдайте другие меры предосторожности.
  • Следите за тем, чтобы препарат не высох, прежде чем вы смоете основной или контрастный краситель. [28]

Что вам понадобится

  • Образец ткани
  • Стеклянные предметные стекла
  • Пипетка
  • Источник пламени, нагреватель предметных стекол или метанол
  • Вода
  • Кристаллический фиолетовый
  • Йод
  • Обесцвечивающая жидкость, например спирт или ацетон
  • Сафранин

Источники

  1. http://iws.collin.edu/mweis/Microbiology/Lab/Lab%20Discussions_Handouts/Gram%20Stain%20Steps.pdf
  2. http://amrita.vlab.co.in/?sub=3&brch=73&sim=208&cnt=2
  3. http://www.microbelibrary.org/library/gram-stain/2886-gram-stain-protocols
  4. http://www.microbelibrary.org/library/gram-stain/2886-gram-stain-protocols
  5. Beveridge TJ, Davies JA (November 1983). "Cellular responses of Bacillus subtilis and Escherichia coli to the Gram stain". Journal of bacteriology 156 (2): 846–58.
  6. Davies JA, Anderson GK, Beveridge TJ, Clark HC (November 1983). "Chemical mechanism of the Gram stain and synthesis of a new electron-opaque marker for electron microscopy which replaces the iodine mordant of the stain". Journal of bacteriology 156 (2): 837–45.
  7. http://amrita.vlab.co.in/?sub=3&brch=73&sim=208&cnt=2
  8. http://www.uphs.upenn.edu/bugdrug/antibiotic_manual/gram1.htm
  9. http://amrita.vlab.co.in/?sub=3&brch=73&sim=208&cnt=2
  10. http://www.microscope.com/education-center/how-to-guides/grams-stain/
  11. http://www.cargille.com/immersionoilmicroscope.shtml
  12. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK8385/
  13. http://amrita.vlab.co.in/?sub=3&brch=73&sim=208&cnt=2
  14. http://archive.crohn.ie/primer/bactid.htm
  15. http://www.microrao.com/micronotes/pg/Gram%20stain.pdf
  16. http://www.microrao.com/micronotes/pg/Gram%20stain.pdf
  17. http://www.microscope.com/education-center/how-to-guides/grams-stain/
  18. http://www.flinnsci.com/teacher-resources/biology/frequently-asked-biology-questions/culture-media-and-stains-preparation-and-use-tips/how-do-i-perform-a-gram-stain/
  19. http://www.flinnsci.com/teacher-resources/biology/frequently-asked-biology-questions/culture-media-and-stains-preparation-and-use-tips/how-do-i-perform-a-gram-stain/
  20. Isenberg, H.D. (ed). 1992. Clinical Microbiology Procedures Handbook . American Society for Microbiology, Washington, D.C.
  21. Isenberg, H.D. (ed). 1995. Essential Procedures for clinical Microbiology. American Society for Microbiology, Washington, D.C.

Об этой статье

Эту страницу просматривали 72 920 раз.

Была ли эта статья полезной?